单细胞CRISPR


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单细胞测序

产品简介

  • 单细胞CRISPR筛选产品能够高通量筛选CRISPR敲除/激活/抑制对单个细胞转录组层面产生的影响,利用10x Genomics平台的单细胞捕获技术,实现一个样本同时分析成千上万个细胞的表达谱,以及其中的近百种CRISPR扰动,进而探究单个基因敲除/激活/抑制后对单个细胞层面的影响,从而揭示更多基因的未知功能。 单细胞 CRISPR 筛选产品首先需要客户根据靶基因设计gRNA,然后将设计好的 gRNA 序列组装到慢病毒载体上用于后续细胞的转化,接下来将组装好的慢病毒对细胞进行转染,并对转染后的细胞通过流式或者抗生素的方法进行筛选。然后通过10x 平台对筛选后的细胞进行捕获:在油包水的反应体系中,Gel Beads 上的oligo 序列会捕获细胞中的 gRNA 序列,并且根据 gRNA 上的 protospacer 序列知道是哪一种 gRNA 转导进了细胞,进而在检测每个细胞表达谱数据的同时,检测每个细胞受到已知gRNA扰动后基因表达的变化情况。最终通过生信分析,以聚类分析、差异分析、功能分析的方式呈现结果。

应用方向

  • 功能基因组学研究

    • ✓ 细胞间转录本异质性研究
    • ✓ 基因作用机制研究
    • ✓ 靶标基因发现
    • ✓ 靶标基因验证
    • ✓ 基因变异研究
    • ✓ GWAS/eQTL研究中SNP的验证

诺禾优势

  • 1.超过30000例单细胞样本制备经验,丰富完善的各物种样本类型制备方法,全流程一站式服务
  • 2.高通量、低成本、高灵敏度的CRIPSPR筛选同时完成对细胞间的异质性研究
  • 3.能在一次实验中获得扰动的转录组数据,清晰地了解细胞类型特异性的基因功能和通路信息,揭示干扰基因潜在的功能作用。
  • 4.可广泛应用于生物学过程功能基因及调节基因筛选、疾病相关基因及其遗传变异筛选、肿瘤表型筛选、耐药基因筛选、治疗新靶点筛选、免疫机制筛查等领域的研究中。

常见问题

  • 1. 如何确保样品在10x捕获时仍然保持sgRNA的表达?

    • 客户可以通过多种手段,比如双抗、FACS、bulk RNA-seq、qPCR等,确定sgRNA在细胞中稳定表达以及表达水平。为了保证您的样本足够新鲜,建议提供新鲜制备的细胞悬液并选择上门捕获服务。
  • 2. 10x CRISPR技术可以检测哪些CRISPR扰动?

    • 10x单细胞CRISPR技术已证实可以检测的扰动有CRISPR敲除(CRISPRko),CRISPR抑制(CRISPRi),和CRISPR激活(CRISPRa)。
  • 3. 10x CRISPR选择3’捕获还是5’捕获?二者有什么区别?

    • 5’ CRISPR筛选能够于现有的大多数Cas9的sgRNA载体兼容。对于已有CRISPR文库或首次进行单细胞CRISPR筛选实验的客户,建议选择5’捕获。
      3’ CRISPR筛选需要将特定的捕获序列添加到载体中来捕获sgRNA。如果您想将单细胞CRISPR与之前使用Feature Barcode进行的3’转录组数据进行比较,建议选择3’捕获,以减少批次效应。
  • 4. 10x CRISPR如何计算目标捕获细胞数?

    • 建议每个基因设置1-5种sgRNA,再添加10%的非靶向sgRNA,每个sgRNA建议捕获100-200个细胞。
      例如:20个目标基因,每个基因2个sgRNA,5个非靶向sgRNA,总共45个sgRNA(20*2+5),建议捕获至少4500个细胞。


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